蛋白质磷酸化是细胞信号转导的核心调控方式 —— 胞外信号被细胞膜受体识别后通过胞内激酶的级联放大反应传递调控信息最终作用于转录因子、启动下游基因表达程序。几乎所有细胞生命活动的稳态维持与应激应答都依赖磷酸化与去磷酸化的动态平衡来实现精准调控。然而完整绘制信号通路的磷酸化全景图谱始终是领域内的技术难题。传统 Western blot 单次仅能检测少数蛋白的磷酸化状态通量十分有限磷酸化质谱虽然覆盖范围更广但存在实验周期长、数据解析高度依赖生物信息学分析的局限。如何从海量的磷酸化事件中快速、低成本地锁定真正驱动表型变化的核心信号轴是信号转导研究者共同面临的普遍痛点。高通量磷酸化抗体芯片通过在固相载体上预固定数百至数千种高特异性磷酸化抗体仅需单次实验、微量样本就能同步绘制 30 余条信号通路的磷酸化全貌。更为关键的是这种 “全局宽筛 定向验证” 的研究策略与高水平研究的论证逻辑高度契合先通过芯片完成无偏性的磷酸化谱筛选定位差异显著的信号通路再借助经典生化实验逐层验证功能构建从 “表型发现” 到 “机制解析” 的完整证据链条。近期东南大学医学院 / 江苏省重症医学重点实验室借助磷酸化抗体芯片技术分别在《Cancer Research》IF:22.6与《Journal of Advanced Research》IF:17.1发表重要研究成果。研究一胸腺肽 α-1 以分子伴侣功能重塑化疗诱导的抗肿瘤免疫化疗诱导肿瘤细胞凋亡后会释放大量凋亡小体Apoptotic Bodies, ABs这类囊泡虽携带丰富的肿瘤抗原却具备免疫抑制特性会阻碍树突状细胞DC的成熟与抗原呈递过程大幅限制化疗与免疫治疗联合或序贯方案的治疗效果。胸腺肽 α-1Thymosin Alpha-1, Tα-1是一种含 28 个氨基酸的内源性肽类激素具备免疫调节与组织保护活性但其调控肿瘤免疫应答的具体分子机制长期未得到清晰阐释。王立新团队在《Cancer Research》发表的研究论文Thymosin Alpha-1 Restores Chemotherapy-Induced Antitumor Immunity by Chaperoning a MicroRNA Ligand of TLR7 in Dendritic Cells首次揭示了 Tα-1 作为内源性 microRNA 分子伴侣的全新生物学功能。研究团队首先观察到接受化疗的肿瘤患者外周血中 Tα-1 水平显著下降提示化疗过程会消耗体内的内源性 Tα-1。在荷瘤小鼠模型中外源性补充 Tα-1 与化疗联合使用后可显著促进传统 1 型 DCcDC1的成熟强化肿瘤抗原的交叉呈递效应并推动抗肿瘤特异性 CD8⁺ T 细胞与 Th1 细胞的活化最终有效增强抗肿瘤免疫应答、抑制肿瘤生长。机制层面Tα-1 能够与肿瘤来源的 ABs 结合伴随 DC 对 ABs 的吞噬进入内溶酶体区室随后 Tα-1 与 ABs 携带的 microRNA尤其是 miR-146a-5p相结合避免其被溶酶体中的 RNase A 降解从而保障 miR-146a-5p 可以有效激活 Toll 样受体 7TLR7启动 DC 成熟、淋巴结迁移及抗原呈递的核心程序。后续实验进一步证实Tα-1 的治疗效应依赖于肿瘤细胞内 miR-146a-5p 的表达水平以及 TLR7 信号通路的完整性。技术亮点该研究采用 CSP100 Plus 磷酸化抗体芯片系统解析了 DC 吞噬 ABs 后以及 Tα-1 干预条件下的磷酸化信号通路改变特征。芯片检测结果表明单独 ABs 处理可导致骨髓来源树突状细胞BMDCs中 93 个磷酸化位点发生变化42 个位点上调、51 个位点下调而 ABs 与 Tα-1 联合处理组相较于单独 ABs 处理组共有 37 个磷酸化位点出现差异改变。借助磷酸化抗体芯片的筛选结果研究团队快速定位了 TLR 信号通路、cGMP-PKG 信号通路、mTOR 信号通路等核心调控网络并明确 Tα-1 能够逆转 ABs 对 TAK1、IκBα、NF-κBp65及 JunB 磷酸化的抑制效应。CSP100 Plus 芯片的高通量检测能力支持单次实验同步分析数百个磷酸化位点的动态变化大幅提升了关键信号通路的筛选效率为后续的机制验证实验提供了清晰的研究方向。研究二黑色素瘤细胞源性 LAG-3 通过 TRIM28 调控 IκBα 降解驱动免疫逃逸LAG-3Lymphocyte Activation Gene-3是继 CTLA-4、PD-1 之后的热门免疫检查点靶点目前已有多款靶向 LAG-3 的抗体药物进入临床应用或临床试验阶段。但现有对 LAG-3 的功能研究多聚焦于免疫细胞层面肿瘤细胞自身表达 LAG-3 的生物学作用与临床意义尚不明确。陈晓光与金晶团队在《Journal of Advanced Research》发表的研究论文Melanoma cell-derived LAG-3 enhances CXCL1/8-driven MDSCs recruitment and immune escape via TRIM28-mediated IκBα degradation首次系统阐明了黑色素瘤细胞自身表达的 LAG-3 在肿瘤免疫逃逸中的关键调控作用。研究人员通过 TCGA、CCLE 数据库分析结合组织芯片免疫组化验证证实 LAG-3 在黑色素瘤细胞中普遍表达且肿瘤细胞 LAG-3 高表达与患者不良预后显著相关。功能实验结果显示肿瘤细胞来源的 LAG-3 可显著上调 CXCL1 与 CXCL8 的转录及分泌水平通过 CXCL1/8-CXCR2 趋化轴招募髓源性抑制细胞MDSCs浸润至肿瘤微环境同时诱导 CD8⁺ T 细胞功能耗竭构建强免疫抑制的肿瘤微环境。机制探究阶段研究团队利用磷酸化抗体芯片对 LAG-3 过表达的 A375 黑色素瘤细胞进行全景式分析发现 LAG-3 表达上调可激活 MAPK、NF-κB、AKT/PKB 及 JAK-STAT 等多条核心信号通路。进一步的分子实验证实LAG-3 通过促进 TRIM28 介导的 IκBα 泛素化降解过程激活 NF-κB 信号通路进而驱动下游 CXCL1/8 的转录表达。在治疗转化层面靶向 CXCL1/8-CXCR2 轴与抗 LAG-3 抗体的联合方案在 LAG-3 高表达的黑色素瘤模型中表现出显著的协同抗肿瘤效果为临床 LAG-3 靶向治疗提供了全新的生物标志物与联合用药思路。技术亮点该研究采用的 PEX100 磷酸化抗体芯片固定有 1318 种高特异性磷酸化抗体可检测 452 个关键信号蛋白的 583 个磷酸化位点覆盖 MAPK、NF-κB、AKT/PKB、JAK-STAT、Wnt、TGF-β 等 30 余条肿瘤相关信号通路。通过对比 LAG-3 过表达与空载对照的 A375 细胞磷酸化谱差异研究人员发现 LAG-3 过表达可显著调控多条经典通路蛋白的磷酸化水平。PEX100 芯片兼具高通量、高覆盖度与高灵敏度的技术特点单次实验即可获取全信号通路的磷酸化图谱有效缩短了从表型观察到机制挖掘的研究周期。后续研究通过 Western blot 实验验证确认了 ERK1/2、p65、AKT 及 STAT3 的磷酸化水平上调并最终锁定了 TRIM28-IκBα-NF-κB 这一全新调控轴。信号通路磷酸化抗体芯片的核心研究价值1高通量广覆盖的检测能力PEX100 芯片搭载 1318 种磷酸化抗体覆盖 30 余条信号通路CSP100 Plus 芯片也可实现数百个磷酸化位点的同步检测。单次实验就能完成全通路磷酸化图谱绘制显著压缩从表型发现到机制解析的研究周期。2无偏性全局筛选优势该技术无需预先设定候选研究通路可从全局层面识别差异磷酸化事件辅助研究者快速定位核心信号调控节点。3多领域研究适配性PEX100 与 CSP100 Plus 芯片可广泛应用于肿瘤学、免疫学、纤维化疾病等多个研究方向具备优异的技术适配性。4衔接筛选与验证的研究桥梁芯片输出的差异磷酸化图谱可为后续 Western blot 验证、信号通路干预实验、体内功能验证等研究提供清晰的方向指引实现高通量筛选与精细化机制研究的高效衔接。参考文献[1] Wei Y, Chen J, Zhang Y, et al. Thymosin Alpha-1 Restores Chemotherapy-Induced Antitumor Immunity by Chaperoning a MicroRNA Ligand of TLR7 in Dendritic Cells. Cancer Res 2026.[2] Xue N, Gong H, Chen W, et al. Melanoma cell-derived LAG-3 enhances CXCL1/8-driven MDSCs recruitment and immune escape via TRIM28-mediated IκBα degradation. J Adv Res. 2026:S2090-1232(26)00516-3.